DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1243

Obtención, caracterización y evaluación de dos preparados candidatos a probióticos desarrollados con residuos agroindustriales

Obtaining, characterization and evaluation of two candidate preparations for probiotics developed with agroindustrial waste

José E. Miranda-Yuquilema, Alfredo Marin-Cárdenas, Davinia Sánchez-Macías, Yaneisy García-Hernández

Resumen


Objetivo. Obtener, caracterizar y evaluar dos biopreparados desarrollados a partir de melaza de caña de azúcar - vinaza de naranja fermentados con levaduras y/o bacterias ácido lácticas. Materiales y métodos. Se utilizó un diseño completamente aleatorizado con cinco repeticiones por tratamiento. Los tratamientos evaluados fueron: T1, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Streptococcus thermophilus y T2, las bacterias anteriores más Saccharomyces cerevisiae y Kluyveromyces fragilis (L-4 UCLV). En un sustrato compuesto por melaza- vinaza se inocularon los microorganismos anteriormente mencionados y estos fueron incubados a 37ºC por 24 h. Se les determinaron a los biopreparados los parámetros fisicoquímicos, microbiológico y se realizaron las pruebas in vitro para evaluar la capacidad probiótica. Resultados. Ambos biopreparados presentaron un color marrón oscuro, dulzón y con pH inferior a 4. El comportamiento bromatológicos y microbiológicos fueron mayores (p>0.05) en el T2. En ambos biopreparados la viabilidad fue superior a 92%. En pruebas in vitro, ambos biopreparados fueron resistentes a pH ácido, sales biliares, amplio espectro de actividad antimicrobiana y efecto inhibitorio a la E. coli, Salmonella spp. y S. aureus. Conclusión. Los biopreparados obtenidos a partir de melaza de caña de azúcar-vinaza de naranja fermentados con levaduras y/o bacterias ácido lácticas demostraron propiedades físicoquímicas, microbiológicas apropiadas para productos probióticos. En las pruebas in vitro, se demostró su efecto potencial como probiótico.


Palabras clave


Cultivo mixto; efecto probiótico; melaza; pruebas “in vitro”; vinaza

Texto completo:

PDF

Referencias


Giang H, Viet T, Ogle B, Lindberg J. Effects of different probiotic complexes of lactic acid bacteria on growth performance and gut environment of weaned piglets. Livest Sci 2010; 133(1):182–184. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2010.06.059

Lyberg K, Lundh T, Pedersen C, Lindberg J. Influence of soaking, fermentation and phytase supplementation on nutrient digestibility in pigs offered a grower diet based on wheat and barley. Anim Sci 2006; 82(06):853–858. https://doi.org/10.1017/ASC2006109

Corr S, Li Y, Riedel C, O'Toole P, Hill C, Gahan G. Bacteriocin production as a mechanism for the antiinfective activity of Lactobacillus salivarius UCC118. Proc Natl Acad Sci USA 2007; 104(18):7617–7621. https://doi.org/10.1073/pnas.0700440104

Begum M, Li HL, Hossain MM, Kim IH. Dietary bromelain-C.3.4.22.32 supplementation improves performance and gut health in sows and piglets. Livest Sci 2015; 180:177–182. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2015.07.013

Yadav S. Bajagai, Athol V. Klieve, Peter J. Dart, Wayne L. Bryden. Probiotics in animal nutrition – Production, impact and regulation. Editor Harinder P.S. Makkar. Paper No. 179. FAO, Animal Production and Health: Rome; 2016.

De MAN JC, ROGOSA M, SHARPE ME. A medium for the cultivation of lactobacilli. J Appl Microbiol 1960; 23(1):130–135 https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1960.tb00188.x

Miranda-Yuquilema J.E. Evaluación del efecto probiótico en dos biopreparados obtenidos a partir de cultivo mixto de bacterias lácticas y levaduras. [Tesis M.Sc]. Universidad Central "Marta Abreu" de Las Villas: Santa Clara, Cuba; 2016.

Dadvar P, Dayani O, Mehdipour M, Morovat M. Determination of physical characteristics, chemical composition and digestion coefficients of treated lemon pulp with Saccharomyces cerevisiae in goat diet. J Anim Physiol Anim Nutr 2015; 99(1):107–113. https://doi.org/10.1111/jpn.12204

AOAC. International Headquarters 2275 Research Blvd, Rockville: Maryland, USA; 2014.

Ortiz A, Reuto J, Fajardo F, Sarmiento S, Aguirre A, Arbeláez G, Gómez D. Evaluación de la capacidad probiótica "in vitro" de una cepa nativa de Saccharomyces cerevisiae. Univ Sci. 2008; 13(2):138-148.

Rodríguez-González M. Aislamiento y selección de cepas del género Lactobacillus con capacidad probiótica e inmunomoduladora. [Tesis Ph.D. en Ciencias]. Universitat Autònoma de Barcelona: Barcelona, Espa-a; 2009.

Heather K, Uri Y, Torey L, Meggan B, Thomas A. Treatment, promotion, commotion: antibiotic alternatives in food-producing animals. Curr Trends Microbiol 2013; 21(3):114-119. https://doi.org/10.1016/j.tim.2012.11.001

Rezzillo C, Codo R, Sánchez D, Pinto D, Marzani B, Filannino P, et al Lactic acid fermentation as a tool to enhance the functional features of Echinacea spp. Microb Cell Fact 2013; 12:44. https://doi.org/10.1186/1475-2859-12-44

Sourav B, and Arijit D. Study of and Cultural Parameters on the Bacteriocins Produced by Lactic Acid Bacteria Isolated from Traditional Indian Fermented Foods. Am J Food Techno 2010; 5(2):111-120. https://doi.org/10.3923/ajft.2010.111.120

Duncan DB. Multiple range and multiple F test. Biometric 1955; 11(1):1-42. https://doi.org/10.2307/3001478

Marin-Cárdenas A. Desarrollo de la tecnología de producción del BIOPRANAL. [Tesis Ph.D en Ciencias]. Universidad Central de Las Villas: Villa Clara, Cuba; 2008.

Jurado Gámez H, Ramírez C, Martínez J. Evaluación in vivo de Lactobacillus plantarum como alternativa al uso de antibióticos en lechones. Rev MVZ Córdoba. 2013; 18:3648-3657. https://doi.org/10.21897/rmvz.131

Sánchez L, Omura M, Lucas A, Perez T, Llanez M, Ferreira C. Cepas de Lactobacillus spp. con capacidades probióticas aisladas del tracto intestinal de terneros neonatos. Rev Salud Animal 2015; 37(2):94-104.

Iyer R, Tomar S, Umamaheswari T, Singh R. Streptococcus thermophilus: a multifunctional lactic acid bacterium. Int Dairy J 2010; 20(3):133–141. https://doi.org/10.1016/j.idairyj.2009.10.005

Le Blanc J.G., Sybesma, W., Starrenburg, M., Sesma, F., de Vos, W.M., de Giori, S. et al, Supplementation with engineered Lactococcus lactis improves the folate status in deficient rats. Nut 2010; 26(7):835–841. https://doi.org/10.1016/j.nut.2009.06.023

Nazef L, Belguesmia Y, Tani A, Prévost H, Drider D.Identification of lactic acid bacteria from poultry feces: evidence on anti-Campylobacter and anti-Listeria activities. Poult Sci 2008; 87(2):329-334. https://doi.org/10.3382/ps.2007-00282

Patil A K, Kumar S, Verma A K, Baghel P S. Probiotics as Feed Additives in Weaned Pigs. Livest Res Int 2015; 3(2):31-39.

Jacela Y, De Rouchey J, Tokach M, Goodband R, Nelssen J, Renter D, Dritz S. Feed additives for swine: Fact sheets – prebiotics and probiotics, and phytogenics. J Swine Health Prod 2010; 18(3):132-136. https://doi.org/10.4148/2378-5977.7067

Pajarillo E, Chae J, Balolong M, Kim H, Kang D. Assessment of fecal bacterial diversity among healthy piglets during the weaning transition. J Gen Appl Microbiol 2014; 60(4):140‒146. https://doi.org/10.2323/jgam.60.140

Pérez M, Laurencio M, Rondón A, Milian G, Bocourt R, Arteaga F. Actividad antimicrobiana de una mezcla probiótica de exclusión competitiva y su estabilidad en el tiempo. Rev Salud Animal 2011; 33(3):147-153.

Khalil R, El Bahloul Y, Djadouni F, Omar S. Isolation and partial characterization of a bacteriocin produced by a newly isolated Bacillus megateriun 19 strain. PJN 2009; 8(3):242-250. https://doi.org/10.3923/pjn.2009.242.250

Klayraung S, Viernstein H, Sirithunyalug J, Okonogi S. Probiotic properties of lactobacilli isolated from thai traditional food. Sci. Pharm 2008; 76(3):485–503. https://doi.org/10.3797/scipharm.0806-11


Métricas de artículo

Cargando métricas ...

Metrics powered by PLOS ALM

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Copyright (c) 2018 Revista MVZ Córdoba

Licencia de Creative Commons
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.