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Supervivencia de postlarvas de camarón blanco Litopenaeus vannamei a diferentes salinidades y temperaturas

Supervivencia de postlarvas de camarón blanco Litopenaeus vannamei a diferentes salinidades y temperaturas



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Cómo citar
Arzola G, J., Piña V, P., Nieves S, M., & Medina J, M. (2013). Supervivencia de postlarvas de camarón blanco Litopenaeus vannamei a diferentes salinidades y temperaturas. Revista MVZ Córdoba, 18(supl), 3618-3625. https://doi.org/10.21897/rmvz.127

Dimensions
PlumX
Juan Arzola G
Pablo Piña V
Mario Nieves S
María Medina J

RESUMEN

Objetivo. Analizar el efecto combinado de salinidad (5, 15, 25, 35 y 45ups) y temperatura (15, 20, 25, 30 y 35oC) sobre la supervivencia y frecuencia de mudas en postlarvas (PL12) de Litopenaeus vannamei. Materiales y métodos. Los experimentos se realizaron por cuadriplicado por cada combinación de salinidad y temperatura. Las postlarvas se mantuvieron en acuarios de 3 L a una densidad de 100PL/l. La salinidad se incrementó disolviendo sal granulada libre de yodo, a partir de agua de mar, mientras que para alcanzar las salinidades menores se utilizó agua dulce filtrada. Las postlarvas aclimatadas a 35ups y 28°C (condición inicial) fueron sometidas abruptamente a las salinidades y temperaturas experimentales por 30 minutos. Después, se filtraron y se colocaron nuevamente en su condición inicial para su recuperación. Transcurridos 30 minutos, se contaron las postlarvas vivas y las mudas. Los datos fueron analizados por un ANOVA de dos vías. Resultados. Se determinó que la supervivencia y frecuencia de mudas fueron significativamente afectadas por la salinidad, temperatura y su interacción (p<0.05). Se obtuvo una supervivencia máxima y mínima de 99.8 y 94.4%. Los porcentajes de supervivencia y frecuencias de mudas disminuyeron a una baja salinidad en combinación a bajas y altas temperaturas, y aumentaron independientemente de la salinidad y temperatura, a excepción de 5ups con 15, 30 y 35°C. La mortalidad máxima de postlarvas fue de 5.6% (5ups y 30°C). Conclusiones. Se determinó que a temperaturas de 20 y 25°C en combinación a las salinidades utilizadas, fueron las mejores condiciones de supervivencia y de resistencia de las postlarvas ante dichas condiciones hidrológicas.


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  1. Racotta I, Palacios E, Hernández R, Bonilla A, Pérez C, Ramírez JL. Criteria for assessing larval and postlarval quality of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquacult 2004; 233:181-195. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.09.031
  2. Arzola GJ, Flores CL, Izabal CA, Gutiérrez RY. Crecimiento de camarón blanco (Litopenaeus vannamei) en un estanque rústico de baja salinidad. Rev Aquatic 2008; 28:8-15.
  3. Palacios E, Racotta IS. Salinity stress test and its relation to future performance and different physiological responses in shrimp postlarvae. Aquacult 2007; 233:123-135. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.04.034
  4. Martínez CL. Camaronicultura avances y tendencias. México: AGT Editor: 2002.
  5. Barbieri E. Acute toxicity of ammonia in white shrimp (Litopenaeus schmitti) at different salinity levels. Aquacult 2010; 306:329-333. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.06.009
  6. Alvarez AL, Racotta IS, Arjona O, Palacios E. Salinity stress test as a predictor of survival during growout in Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquacult 2004; 237:237-249. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.03.029
  7. Pi-a VP, Nieves SM, Ramos L, Chavira CO, Voltolina D. Survival, growth and feeding efficiency of Litopenaeus vannamei protozoea larvae, fed different rations of diatom Chaetoceros muelleri. Aquacult 2005; 249:431-437. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.04.037
  8. Pi-a VP, Voltolina D, Nieves SM, Robles M. Survival, development and growth of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei protozoea larvae, fed with monoalgal and mixed diets. Aquacult 2006; 253:523-530. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.07.016
  9. Gelabert R, Brito R, Gaxiola MG, Castro T, Rosas C. Efecto de nauplios de Artemia franciscana enriquecidos sobre el crecimiento, supervivencia y resistencia al estrés de postlarvas (PL5-40) de Litopenaeus vannamei. Univ Cien 2008; 24:29-40.
  10. Valenzuela W, Rodríguez G, Ponce PJ, Esparza H. Efecto de diferentes combinaciones de temperatura y salinidad sobre el consumo específico de oxígeno en el camarón blanco Litopenaeus vannamei. Rev Biol Mar y Oceanog 2011; 46:303-311. http://dx.doi.org/10.4067/S0718-19572011000300002
  11. Díaz F, Re AD, Sierra E, Diaz, IE. Effects of temperature and salinity fluctuation on the oxygen consumption, ammonium excretion and osmoregulation of the blue shrimp Litopenaeus stylirostris. J Shellfish Res 2004; 23:903-910.
  12. Ramos CS, Ramos SE. Abundancia relativa de postlarvas de camarones peneidos en la bahía Salinas del Marqués, Golfo de Tehuantepec, México. Marzo a junio de 1999. Rev Biol Mar y Oceanog 2006; 41:121-128.
  13. Valenzuela W, Rodríguez G, Esparza H. Cultivo intensivo de camarón blanco Litopenaeus vannamei en agua de pozo a baja salinidad como alternativa acuícola en zonas de alta marginación. Ra Ximhai 2010; 6:1-8.
  14. Re AD, Díaz F, Sierra E, Gómez S. Consumo de oxígeno, excreción de amonio y capacidad osmorreguladora de Litopenaeus stylirostris expuesto a diferentes combinaciones de temperatura y salinidad. Ciencias Marinas, 2004; 30(3):443-453.
  15. Hernández RM, Bückle LF, Palacios E, Barón SB. Preferential behavior of white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone 1931) by progressive temperature-salnity simultaneous interaction. J Therm Biol 2006; 31(7):565-572. http://dx.doi.org/10.1016/j.jtherbio.2006.05.008
  16. Jaime B, Galindo J, Laria E, Cupul F, Vega F. Traslado de postlarvas de Litopenaeus vannamei a diferentes tiempos, salinidades y densidades y su efecto en la supervivencia y algunos marcadores bioquímicos. Rev Biol Mar Oceanog 2008; 43:681-686.
  17. Ye L, Jiang S, Zhu X, Yang Q, Wen W, Wu K. Effects of salinity on growth and energy budget of juvenile Penaeus monodon. Aquacult 2009; 290:140-144. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.01.028
  18. Zar JH. Biostatistical analysis. Upper Saddle River, USA: Prentice-Hall Inc; 2009.
  19. StatSoft Inc. Statistica for Windows Manual version 7.0. Tulsa, Oklahoma, USA: StatSoft Inc; 2004.
  20. Spanopoulus M, Martínez CA, Vanegas RC, Rosas C, Ross LG. The combined effects of salinity and temperature on the oxygen consumption of juvenile shrimps Litopenaeus stylirostris. Aquacult 2005; 244:341-348. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.11.023
  21. Ponce J, Martínez CA, Ross LG. The effects of salinity and temperature on the growth and survival rates of juvenile White shrimp, Penaeus vannamei. Aquacult 1997; 157:107-115. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(97)00148-8
  22. Barbieri E. Use of oxygen consumption and ammonium excretion to evaluate the sublethal toxicity of cadmium and zinc on Litopenaeus schmitti. Water Environ Res 2007; 79:461-466.
  23. Balbi F, Rosas J, Velásquez A, Cabrera T, Maneiro C. Aclimatación de postlarvas de diferentes edades y criaderos de camarón marino Litopenaeus vannamei. Rev Biol Mar y Oceanog 2005; 40:109-115.
  24. Tsuzuki M, Cavalli RO, Bianchini A. The effects of temperature, age and acclimation to salinity on the survival of Farfantepenaeus paulensis postlarvae. J World Aquacult Soc 2000; 31:459-468.
  25. Martínez CL, Martínez PM, Cortes JE. Camaronicultura mexicana y mundial ¿actividad sustentable o industria contaminante?. Rev Int Contam Ambie 2009; 25:181-196.

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