DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1340

Eficacia del tratamiento con secnidazol en dosis única contra la infección natural de Giardia duodenalis en terneros

Single dose secnidazole treatment efficiency against naturally occuring Giardia duodenalis infection in calves

Göktuğ TOROS, Kerem URAL

Resumen


Objetivo. En el presente estudio se pretendía establecer la eficacia de 30 mg / kg de dosis única de secnidazol en terneros naturalmente infectados con Giardia duodenalis. Materiales y métodos. En un intento de realizar un estudio original, se matricularon 18 terneros, de distintas raza, edad y de ambos sexos. El diagnóstico se basó en la identificación de trofozoítos y /o quistes en la flotación fecal entre terneros naturalmente infectados con G. duodenalis, además de utilizar kits de diagnóstico rápido que funcionan con principios inmunocromatográficos en fase sólida y aplicación de Reacción en Cadena de Polimerasa anidada con β-giardina. El conteo de quistes por gramo de heces se realizó entre los días 0, 3, 7 y 10 en todos los casos. En los días 0 y 10 se determinaron los valores hematológicos (WBC, RBC, HCT, MCHC, PLT) y suero bioquímico (ALT, AST, creatinina, urea). Resultados. Se inscribieron dos grupos diferentes de terneros tratados con secnidazol (n: 9) y el grupo control (n: 9). Entre los becerros incluidos en el grupo de tratamiento se administró secnidazol en una dosis única de 30 mg/kg oralmente al día 0, mientras que el grupo de control se dejó sin ningún ingrediente activo. Se analizó el conteo de quistes por gramo de heces, valores hematológicos y bioquímicos de suero entre grupos y comparaciones intragrupo. Giardia duodenalis ensamblaje A3 se identificó en los 18 terneros. En los días 3, 7 y 10 hubo una reducción significativa (P˂0.001) en la excreción de quistes; Mientras que la evaluación de la excreción geométrica promedio de quistes reveló una reducción del 100% en los días 7 y 10. Entre los dos grupos de análisis estadístico de las variables hematológicas y sero-bioquímicas no reveló significación estadística en los días 0 y 10. Conclusión. En conclusión secnidazol en una dosis única de 30 mg / kg podría ser prácticamente aplicable, a un precio razonable, la seguridad, completamente eficaz y causando un tratamiento de recuperación rápida protocolo para la terapia de terneros con Giardiasis.


Palabras clave


Giardia duodenalis; calf; β-giardin nested PCR; secnidazol; treatment

Texto completo:

PDF EPUB HTML

Referencias


O'Handley RM, Cockwill C, Jelinski M, McAllister TA, Olson ME. Effects of repeat fenbendazole treatment in dairy calves with giardiosis on cyst excretion, clinical signs and production. Vet Parasitol 2000; 89(3): 209- 218. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(00)00200-4

Barigye R, Dyer NW, Newell T, Khaitsa ML, Trout JM, Santin M, Fayer R. Molecular and immunohistochemical detection of assemblage E, Giardia duodenalis in scouring North Dakota calves Vet Parasitol 2008; 157: 196–202.

Huang J, Yue D, Qi M, Wang R, Zhao J, Li J, Shi K, Wang M, Zhang L. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. and Giardia duodenalis in dairy cattle in Ningxia, northwestern China. BMC Vet Res 2014; 10(292):1-5.

Lee SH, VanBik D, Kim HY, Cho A, Kim JW, Byun JW, Oem JK, Oh SI, Kwak D. Prevalence and molecular characterisation of Giardia duodenalis in calves with diarrhoea. Vet Rec 2016; 178(25): 633. https://doi.org/10.1136/vr.103534

Coklin T, Farber JM, Parrington LJ, Coklin Z, Ross WH, Brent R. DixonTemporal changes in the prevalence and shedding patterns of Giardia duodenalis cysts and Cryptosporidium spp. oocysts in a herd of dairy calves in Ontario. Can Vet J 2010; 51(8): 841–846.

Gharieb RMA, El-Ghany AMA. Giardia lamblia in household persons and buffalo calves; prevalence, molecular identification and associated risk factors. Japan J Vet Res 2016; 64(2): 15-22.

Hamnes IS, Gjerde BK, Robertson LJ. Prevalence of Giardia and Cryptosporidium in dairy calves in three areas of Norway. Vet Parasitol 2006; 140: 204–216. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.03.024

Suman MSH, Alam MM, Pun SB, Khair A, Ahmed S, Uchida RY. Prevalence of Giardia lamblia infection in children and calves in Bangladesh Bangl J Vet Med 2011; 9(2): 177–182.

Trout JM, Santín M, Greiner E, Fayer R. Prevalence and genotypes of Giardia duodenalis in post-weaned dairy calves. Vet Parasitol 2005; 130(3): 177-183. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.03.032

Tiranti K, Larriestra A, Vissio C, Picco N, Alustiza F, Degioanni A, Vivas A. Prevalence of Cryptosporidium spp. and Giardia spp. spatial clustering and patterns of shedding in dairy calves from Córdoba, Argentina. Rev Bras Parasitol Vet 2011; 20(2): 140-147. https://doi.org/10.1590/S1984-29612011000200009

Winkworth CL, Learmonth JJ, Matthaei CD Townsend CR. Molecular Characterization of Giardia Isolates from Calves and Humans in a Region in Which Dairy Farming Has Recently Intensified.▿ Appl Environ Microbiol 2008; 74(16): 5100-5105. https://doi.org/10.1128/AEM.00232-08

Cacciò SM, Thompson RC, McLauchlin J, Smith HV. Unravelling Cryptosporidium and Giardia epidemiology. Trends Parasitol 2005; 21: 430–437. https://doi.org/10.1016/j.pt.2005.06.013

Geurden T, Geldhof P, Levecke B, Martens C, Berkvens D, Casaert S, Vercruysse J, Claerebout E. Mixed Giardia duodenalis assemblage A and E infections in calves. Int J Parasitol 2008; 38(2): 259–264. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2007.07.016

Itagaki T, Kikawa M, Terasaki K, Shibahara T, Fukuda K. Molecular characterization of parthenogenic Fasciola sp. in Korea on the basis of DNA sequences of ribosomal ITS1 and mitochondrial NDI gene. J Vet Med Sci 2005; 67: 1115–1118. https://doi.org/10.1292/jvms.67.1115

Santina M, Dargatz D, Fayer R. Prevalence of Giardia duodenalis assemblages in weaned cattle on cow-calf operations in the United States. Vet Parasitol 2012; 183: 231–236. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.07.042

Ali V, Nozaki T. Current therapeutics, their problems, and sulfur-containing-amino-acid metabolism as a novel target against infections by "amitochondriate" protozoan parasites. Clin Microbiol Rev 2007; 20: 164–187. https://doi.org/10.1128/CMR.00019-06

Tejman-Yarden N, Eckmann L. New approaches to the treatment of giardiasis. Curr Opin Infect Dis 2011; 24(5): 451-456. https://doi.org/10.1097/QCO.0b013e32834ad401

Schwartz E, Lachish T, Meltzer E. Treatment of Giardiasis after Nonresponse to Nitroimidazole. Emerg Infect Dis 2014;20(10):1738-1740 https://doi.org/10.3201/eid2010.140073

Boreham PFL, Phillips RE, Shepherd RW. Altered uptake of metronidazole in vitro by stocks of Giardia intestinalis with different drug sensitivities. Trans R Soc Trop Med Hyg 1988; 82:104–106. https://doi.org/10.1016/0035-9203(88)90278-7

Tangtrongsup S, Scorza V. Update on the Diagnosis and Management of Giardia spp. Infections in Dogs and Cats. Topics in Companion Animal Medicine 2010; 25(3): 155-162. https://doi.org/10.1053/j.tcam.2010.07.003

Geurden T, Pohleb H, Sarrea C, Dreesena L, Vercruyssea J, Claerebouta E. The efficacy of a treatment with fenbendazole against an experimental Giardia duodenalis infection in lambs. Small Rum Res 2011; 96(2–3): 211–215.

Alιç Ural D, Ayan A, Aysul N, Balιkçι C, Ural K. Secnidazol Treatment to Improve Milk Yield in Sheep with Giardiasis. Atatürk Üniversitesi Vet Bil Derg 2014; 9(2): 74-82. https://doi.org/10.17094/avbd.91674

Ural K, Aysul N, Voyvoda H, Ulutas B, Aldemir OS, Eren H. Single dose of secnidazole treatment against naturally occuring Giardia duodenalis infection in Sakiz lambs. Rev MVZ Cordoba 2014; 19(1): 4023-4032. https://doi.org/10.21897/rmvz.122

Karademir U, Ural K, Aysul N, Ayan A, Toplu S, Ortlek O, Balikci C, Künyeli A, Erdogan H. The efficacy of chloroquine treatment against naturally occuring Giardia duodenalis infection in lambs. Revista MVZ Córdoba 2016; 21(2): 5328-5335. https://doi.org/10.21897/rmvz.599

Lalle M, Pozio E, Capelli G, Bruschi F, Crotti D, Cacciò SM. Genetic heterogeneity at the β-giardin locus among human and animal isolates of Giardia duodenalis and identification of potentially zoonotic subgenotypes. Int J Parasitol 2005; 35(2): 207-213. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2004.10.022

Gultekin M, Ural K, Aysul N, Ayan A, Balikci C, Akyildiz G. The efficacy of chloroquine treatment of Giardia duodenalis infection in calves. Vlaams Diergeneeskundig Tijdschrift 2016; 85: 335-341.

da Silva AS, da Silva MK, Oliveira CB, Zanette RA, Monteiro SV. Efficacy of drugs against Giardia muris in mice Mus musculus naturally infected Ciências Agrárias, Londrina, 2008; 29(1): 175-178.

Bilal CQ, Khan MS, Avais M, Ijaz M, Khan JA. Prevalence and chemotherapy of Balantidium coli in cattle in the River Ravi region, Lahore (Pakistan). Vet Parasitol 2009; 163(1-2):15-17.

Alιç Ural D, Aysul N, Gültekin M. The Efficacy of Oral Administration of Clinoptilolite Against Naturally Occuring Giardiasis in Calves. Kocatepe Vet J 2016; 9(4): 288-293. https://doi.org/10.5578/kvj.28122

DaSilva AS, Castro VSP, Tonin AA, Brendler S, Costa MM, Jaques JA, Bertoletti B, Zanette RA, Raiser AG, Mazzanti CM, Lopes STA, Monteiro SG. Secnidazole for the treatment of giardiasis in naturally infected cats. Parasitol Int 2011; 60(4):429-432. https://doi.org/10.1016/j.parint.2011.06.024


Métricas de artículo

Cargando métricas ...

Metrics powered by PLOS ALM

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Copyright (c) 2018 Revista MVZ Córdoba

Licencia de Creative Commons
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.