Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Compuestos organoclorados residuales en dos especies ícticas de la Ciénaga Grande del Bajo Sinú, Córdoba, Colombia

Compuestos organoclorados residuales en dos especies ícticas de la Ciénaga Grande del Bajo Sinú, Córdoba, Colombia



Abrir | Descargar

Cómo citar
Lans, E., Díaz, B., & Paez, M. (2011). Compuestos organoclorados residuales en dos especies ícticas de la Ciénaga Grande del Bajo Sinú, Córdoba, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 16(1). https://doi.org/10.21897/rmvz.299

Dimensions
PlumX
Edineldo Lans
Basilio Díaz
Manuel Paez

Objetivo. Determinación de niveles de pesticidas organoclorados (POCs) en especies ícticas, procedentes de la Ciénaga Grande del Bajo Sinú, Materiales y métodos. Se usó un cromatógrafo de gases (Perkin Elmer Autosystem XL) con detector captura de electrones y columna capilar 5% de difenil y 95% de dimetilpolisiloxano, de 30 m, 0.25 mm de diámetro interno y 0.25 μm de espesor de película. Las especies estudiadas fueron: bocachico (Prochilodus magdalenae) y moncholo (Hoplias malabaricus), durante las estaciones seca y húmeda. Resultados. El porcentaje de recuperación de los pesticidas determinados se registró entre 80 y 84%, mientras que los límites de detección y cuanficación fueron 0.02 a 0.18 ng/g y 0.2 a 1.8 ng/g respectivamente. La desviación estándar relativa permaneció por debajo del 7% en todos los casos. De los pesticidas organoclorados investigados, en las dos especies se detectaron el a-clordano, endrín y aldrín. Se observó que a medida que aumenta el peso y el tamaño del pez, aumenta la concentración de los plaguicidas en una de las especies. Los niveles de concentración de los POCs estuvieron en el intervalo de 0.35-3.75 y 0.48-5.49 ng/g para el moncholo (Hoplias malabaricus) and bocachico (Prochilodus magdalenae) respectivamente. Conclusiones. La frecuencia de aparición de POCs y los niveles detectados en las especies podrían ser consecuencia de actividades antropogénicas realizadas en los alrededores de la ciénaga. La correlación entre las medidas biométricas y la concentración depende de la especie íctica. Las concentraciones encontradas en las especies estudiadas, Hoplias malabaricus y Prochilodus magdalenae no representan toxicidad letal inmediata

Visitas del artículo 972 | Visitas PDF


Descargas

Los datos de descarga todavía no están disponibles.
  1. CVS, U.de A. Estudio ecológico y ambiental de la Ciénaga Grande de Lorica. Montería: CVS.1993.
  2. CVS, Estudios básicos para un plan de ocupación del espacio en la cuenca del rio Sinú. Informe. Montería: Corporación Autónoma de los Valles del Sinu y San Jorge CVS.1985.
  3. UNEP: Draft Guidance on the Global Monitoring Plan for Persistent Organic Pollutants. UNEP, February 2007
  4. Lans E, Marrugo J, Díaz B. Estudio de la Contaminación por Pesticidas Organoclorados en Aguas de la Cienaga Grande del Bajo Sinú, Córdoba. Colombia. Temas Agrarios. Universidad de Córdoba, 2008; 13(1): 49-56
  5. Borrell A, Canto G, Pastor T, Aguillar, A. Organochlorine compounds in common dolphins (Delphins delphis) from the Atlantics and Mediterranean Water of Spain. Environ Pollut 2001;114: 265-74. http://dx.doi.org/10.1016/S0269-7491(00)00213-X
  6. Storelli M, Marcotrigiano, G. Levels and congener pattern of polychlorinated biphenyls in blubber of the Mediterranean bottlenose dolphins Tursiops truncates. Environ Int 2003; 28:559-65. http://dx.doi.org/10.1016/S0160-4120(02)00081-8
  7. Baird, C. Química ambiental. Espa-a, Editorial: Reverté, 2001: 313-20
  8. Mojica, JI; Calle V JC . Libro Rojo De Peces Dulceacuícolas De Colombia. Bogotá, Colombia: Instituto de Ciencias Naturales, 2002: 15-25.
  9. Oyakawa OT. Checklist of the freshwater fishes of South and Central America. Porto Alegre Brazil, Editora da Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul; 2003: 238-240
  10. Galvis G, Mojica JI, Camargo M. Peces del Catatumbo. Bogotá D.C: Asociación Cravo Norte; 1997: 25-30.
  11. Tordecilla PG, Sánchez BS, Olaya NC. Crecimiento y mortalidad del Moncholo (Hoplias malabaricus, Bloch, 1794) en la cuenca del río Sinú, Colombia. Rev MVZ Córdoba 2003;8:(1): 278-284.
  12. Kannan K, Tanabe S, Ramesh A, Subramanian A, Tatsukawua R. Persistent organochlorine residues in foodstuffs from Indian and their implications on human dietary exposure. JAFC 1992; 40:518-29. http://dx.doi.org/10.1021/jf00015a032
  13. Giesy J, Kannan K. Dioxin-like and non-dioxin-like toxic efects of polychlorinated biphenyl (PCBs): implications for risk assement critical. Rev Toxicol 1998; 28:511-69. http://dx.doi.org/10.1080/10408449891344263
  14. Argumedo C; Uparela, P. Validación e implementación de un método para determinación de pesticidas organoclorados en aguas, peces y sedimentos mediante la técnica de cromatografía de gases con detector captura de electrones. Facultad de Ciencias Básicas e Ingenierías, Departamento de Química, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia 2007.
  15. Miller JN, Miller JC. Estadística y Quimiometría para Química Analítica. 4 Ed. Madrid: Pearson Educación S.A. 2002: 143-152.
  16. Plata J, Campos N, Ramírez G. Flujo de compuestos organoclorados en sedimentos de la Ciénaga Grande de Santa Marta. Caldasia 1993; 17(2):199-204.
  17. Gneri F S, Angelescu V. La nutrición de los peces iliófagos en relación con el metabolismo general del ambiente acuático. Rev Inst Nac Invest C N Cienc Zool 1951;2(1):1-4.
  18. Lledos J, Morell M, Sánchez J. Distribución de los microcontaminantes orgánicos en un ecosistema fluvial. Significación de los estudios de impacto. Fish Res Board Can 1992; 25 (2443):65-70.
  19. Voorspoels, S. et al. Levels and profiles of PCBs and OCPs in marine benthic species from the Belgian North Sea and the Western Scheldt Estuary. Mar Pollut Bull 2004;49: 391. http://dx.doi.org/10.1016/j.marpolbul.2004.02.024
  20. Reinert R, Bergman H. Residues of DDT in Lake trout(Salvelinus namaycush) ans coho salmon(Oncorhynchus Kisutch) from the Great Lake. Res Board Can1974; 31 (191):220-32.
  21. Monod G, Keck G. PCBs in Lake Geneva (Lake Leman) fish. Bull Environ Contam Toxicol 1982; 29(55):570-6. http://dx.doi.org/10.1007/BF01669623
  22. Giouranovits-Psyllidou R, Georgakopoulos-Gregoriades E.Vassilopoulou V. Monitoring of organochlorine residues in red mullet (Mullus barbatus) from Greek Water. Bull Environ Contam Toxicol 1994;28(22):121 - 3. http://dx.doi.org/10.1016/0025-326x(94)90549-5
  23. Allison D, Kallman B, Cope B, Valin C. Insecticide: effects on cutthroat trout of repeated exposure to DDT. Science 1963;142(3594):958-61. http://dx.doi.org/10.1126/science.142.3594.958
  24. Kellogg R, Bulkley R. Seasonal concentrations of dieldrin in water channel catfish, and cattfish-food organisms Des Moines River Iowa 1971/1973. Pestic Mont J 1976;9(4):86-94.
  25. Mora M, Papoulias D, Nava I, Bucker D. Comparative assesment of contaminants in fish from four resacas of the Texas USA-Tamaulipas, Mexico border region. Environ Int 2001;27:15-20. http://dx.doi.org/10.1016/S0160-4120(01)00047-2
  26. Dybern BI, Dalziel J, Baker C, Jensen S. Manual de métodos de investigación del medio ambiente acuático. Análisis de presencia de metales y organoclorados en los peces. Roma: FAO; 1983.
  27. Betancourt J, Ramirez G. Study of the processes related to the presence of organochloride pesticides in the Ciénaga Grande de Santa Marta. Bol Invemar 2005;34(1):121-39.
  28. Samiullah Y. Biological monitoring of environmental contaminants. London: University of London; 1990.
  29. Kalyoncu L; Agca I And Aktumsek A. Some organochlorine pesticide residues in fish species in Konya, Turkey Chemosphere. 2009;74: 885–889.
  30. Muralidharan Subramaniyan; Dhananjayan Venugopal And Jayanthi Palaniyappan. Organochlorine pesticides in commercial marine fishes of Coimbatore, India and their suitability for human consumption Environ Res 2009; 109: 15–21.

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |