DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.404

Asociación serológica de la rinoneumonitis viral equina y la anemia infecciosa equina

Julián Ruiz, Ángel Cruz, Erica Reyes, Agustín Góngora, Albeiro López

Resumen


Objetivo. Determinar el nivel de asociación serológica entre los herpesvirus equinos tipos 1 y 4 (HVE-1 y HVE-4) causantes de la rinoneumonitis equina y el virus de la anemia infecciosa equina (VAIE) en caballos de trabajo provenientes de 5 municipios del Meta. Materiales y métodos. Se realizó una encuesta serológica transversal en 68 equinos provenientes de los municipios de San Martín, Guamal, Restrepo, Cumaral y Paratebueno. Para la evaluación de los anticuerpos contra los HVE-1 y HVE-4, se utilizó un ELISA indirecto para detectar la presencia de anticuerpos dirigidos contra la glicoproteína G del HVE-1 y HVE-4 (Svanovir ™ EHV1/EHV4-Ab ELISA); para el diagnóstico de anticuerpos contra el VAIE se utilizó la prueba de inmunodifusión en agar de gel de Coggins. Resultados. No se encontraron reactores al HVE-1; sin embargo, el porcentaje de seropositividad fue de 94.12% (64/68) y 13.2%(9/68) para HVE-4 y VAIE respectivamente. El porcentaje de animales coinfectados HVE-4 y AIE fue 13.23% (9/68). Cuando se discriminaron los resultados por Municipio se encontró un 27.9% (19/68) de reactividad en el municipio de Restrepo, 26.5% (18/68) en Cumaral, 14.7% (10/68) en Paratebueno, 14.7% (10/68) en Guamal, y 10.3% (7/68) en San Martin. El porcentaje de reactores por municipio al VAIE fue Cumaral 5.88% (4/68), Restrepo 4.4% (3/68), Guamal 1.47%(1/68) y San Martín 1.47% (1/68). Conclusión. El alto porcentaje de coinfección entre HVE-4 y VAIE sugiere un efecto importante en la interacción, pues el efecto inmunosupresor del VAIE podría facilitar la reactivación del estado latente del HVE-4.

Palabras clave


Herpes; infectious anemia; virus; equines.

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Referencias


Allen GP. Equine rhinopneumonitis. In: OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, ed. OIE, 5th Edition. París; Office International des Epizooties: 2004.

OIE. Equine Infectious Anemia: In: OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, ed. OIE, 5th Edition ed. París; Office International des Epizooties: 2004.

Telford EA, Watson MS, Mcbride K, Davison AJ. The DNA sequence of equine herpesvirus-1. Virology 1992; 189: 304- 316. http://dx.doi.org/10.1016/0042-6822(92)90706-U

Telford EA, Watson MS, Perry J, Cullinane AA, Davison AJ. The DNA sequence of equine herpesvirus-4. J Gen Virol 1998; 79: 1197-1203. http://dx.doi.org/10.1099/0022-1317-79-5-1197

Crabb BS, Studdert MJ. Equine Rhinoneumonitis (equine Herpesvirus 4) and Equine Abortion (equine Herpesvirus 1). In: Virus Infections of Equines, ed. Studdert MJ, ELSEVIER, Holanda 1995.

Allen GP. Respiratory Infections by Equine Herpesvirus Types 1 and 4. In: Equine Respiratory Diseases, ed. (Eds) LP. International Veterinary Information Service, Ithaca NY. 2002.

Roizman B, Knipe DM, Whitley RJ. Herpes simplex viruses and their replication. In Fields Virology, Fifth edition. USA; Knipe DM and Howley PM, Editors: 2007.

Dimock WW, Edwards PE, Bruner DW. Infections observed in equine fetuses and foals. Cornell Vet Clin North Am Equine Pract 1947; 37: 88-89.

Gilkerson JR, Love DN, Whalley JM. Epidemiology of equine herpesvirus abortion: searching clues to the future. Aust Vet J 1998; 76: 675-676. http://dx.doi.org/10.1111/j.1751-0813.1998.tb12280.x

van Maanen C, Sloet van OldruitenborghOosterbaan MM, Damen EA, Derksen AG. Neurological disease associated with EHV-1-infection in a riding school: clinical and virological characteristics. Equine Vet J 2001; 33:191-196. http://dx.doi.org/10.1111/j.2042-3306.2001.tb00600.x

Stierstorfer B, Eichhorn W, Schmahl W, Brandmuller C, Kaaden OR. Equine herpesvirus type 1 (EHV-1) myeloencephalopathy: a case report. J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health 2002; 49:37-41. http://dx.doi.org/10.1046/j.1439-0450.2002.00537.x

Gilkerson JR, Jorm LR, Love DN, Lawrence GL, Whalley JM. Epidemiological investigation of equid herpesvirus-4 (EHV-4) excretion assessed by nasal swabs taken from thoroughbred foals. Vet Microbiol 1994; 39:275-283. http://dx.doi.org/10.1016/0378-1135(94)90164-3

Borchers K, Wolfinger U, Ludwig H. Latency-associated transcripts of equine herpesvirus type 4 in trigeminal ganglia of naturally infected horses. J Gen Virol 1999; 80:2165-217. http://dx.doi.org/10.1099/0022-1317-80-8-2165

Allen GP. Epidemic disease caused by equine herpesvirus-1: recommendations for prevention and control. Equine Vet Educ 2002; 14:136-142. http://dx.doi.org/10.1111/j.2042-3292.2002.tb00157.x

Lignée M. Memoire et observations sur une maladie de sang, connus sous le nom d'anémie hydrohémie. Cachexie aqueuse du cheval. Rec Med Vet Ec Alfort 1843; 20: 30.

Valle H, Carre H. Sur la natur infectieuse de l´anenie du cheval. Acad Sci 1904; 139: 331-333.

OIE, HandiSTATUS 2004.[fecha de acceso agosto de 2007]. URL disponible en: http://www.oie.int/hs2/report.asp

Stein CD, Lotze JC, Mott LO. Transmission of equine infectious anemia by the satablefly, Stomoxys calcitrans, the horse fly, tabanus sulcifrons, and by injection of minute amounts of virus. Am J Vet Res 1942; 4: 183-193.

Montelaro RC, Ball JM, Rushlow KE. Equine retroviruses, In Levy JA. (ed), The Retroviridae, vol 2. Plenum Press, New York. 1993.

Harrold SM, Cook SJ, Cook FR, Rushlow KE, Issel CJ, Montelaro RC. Tissue Sites of Persistent Infection and Active Replication of Equine Anemia Infectious Virus during Acute Disease and Asymptomatic Infection in Experimentally Infected Equids. J Virol 2000; 74: 3112-3121. http://dx.doi.org/10.1128/JVI.74.7.3112-3121.2000

Foil LD, Meek CL, Adams WV, Issel CJ, Mechanical transmission of equine infectious anemia virus by deer flies (Chrysops flavidus) and stable flies (Stomoxys calcitrans), Am J Vet Res 1983; 44: 155– 156.

Ramírez GC, Chaparro JJ, Vera VJ, Villamil LC, Romero JR. Primer aislamiento de herpesvirus equino en Colombia. Rev Col Cienc Pec 2001; 14: 73.

Ruiz J, Goez YP, Urcuqui-Inchima S, Góngora A, López-Herrera A. Evidencia serológica de la infección por herpesvirus equino tipos 1 y 4 en dos regiones de Colombia. Acta Biol Colomb 2006; 11(2): 186.

Ruiz J, Goez Y, Urcuqui-Inchima S, LópezHerrera A. Infección por herpesvirus equino tipos 1 y 4 en células mononucleares de sangre periférica y ganglios trigéminos de equinos. Acta Biol Colomb 2006; 11(2): 187 1136

Ramírez JJ. Hincapié O. Diagnóstico de la Anemia Infecciosa Equina en Colombia por la prueba de inmunodifusión de Coggins. Revista ICA. 1976;11: 173-179.

López J, Mestra O, Reza L. Estudio seroepidemiológico de la anemia infecciosa equina en caballos criollos de paso en las pesebreras del municipio de Montería, Córdoba. Rev.MVZ Córdoba 2000; 5: 20.

Sarmiento P, Qi jano-Pinzón M. Prevalencia del virus de la anemia infecciosa equina (AIE) en dos poblaciones de caballos de trabajo de los departamentos del Chocó y la Guajira. Univ Scient 2005; 10: 55-60. 1

Instituto Colombiano Agropecuario – ICACenso poblacional equino 2001. Instituto Colombiano Agropecuario, ICA, 2001.

Instituto Colombiano Agropecuario – ICAResolución ICA 1096. Instituto Colombiano Agropecuario, ICA, Abril 4 de 2005

Craigo JK, Feng L, Steckbeck JD, Durkin S, Howe L, Cook SJ, et al. Discerning an Effective Balance between Equine Infectious Anemia Virus Attenuation and Vaccine Efficacy. J Virol 2005; 79: 2666- 2677. http://dx.doi.org/10.1128/JVI.79.5.2666-2677.2005

Smith TA, Davis E, Carpenter S. Endotoxin treatment of equine infectious anaemia virus-infected horse macrophage cultures decreases production of infectious virus. J Gen Virol 1998; 79: 747-755. http://dx.doi.org/10.1099/0022-1317-79-4-747


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