Variación estacional de las características seminales del bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Telostei, pimelodidae)

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Autores

Juan Ramirez Merlano Víctor Medina Robles Pablo Cruz-Casallas

Resumen

Objetivo. Determinar la variación de la calidad, el contenido iónico y la osmolaridad del plasma seminal de Pseudoplatystoma metaense durante la estación reproductiva. Materiales y métodos. Se utilizaron machos sexualmente maduros durante un periodo reproductivo (marzo a agosto). La espermiación fue inducida con Extracto de Hipófisis de Carpa (4 mg/kg). Se evaluó el volumen (mL), movilidad masal (%), tiempo de activación (sg), espermatocrito (%); concentración espermática (106 sptz/µL) y viabilidad (%). También fue determinada la movilidad (%) y velocidad individual por medio de un Sistema de Análisis Espermático Asistido por Computador (CASA). La osmolaridad (mOsm/Kg) y la concentración de iones (Na+, Cl+, K+ y Mg2+) y glucosa fue determinada en plasma seminal obtenido por centrifugación del semen a 14.000 g. La concentración de iones y glucosa fue establecida a través de un sistema de reflectancia.Resultados. El semen de Pseudoplatystoma metaense presentó una movilidad masal mayor al 90%, con el menor valor de movilidad progresiva lineal rápida para el mes de abril (34.9±9.0%) y en general valores de espermatozoides inmóviles menores al 10%. El plasma seminal mostró una osmolaridad de 259.3± 3.5 mOsm/Kg, con una concentración promedio de glucosa e iones Na+, Cl+, K+ y Mg2+ de 142.7±2.8, 118±2.2, 4.8±0.4 y 0.33±0.0 mmol/L, respectivamente, durante la época reproductiva. Conclusiones. La calidad seminal de bagre rayado no presentó variaciones en la estación reproductiva mostrando una alta calidad para los procesos de fecundación.

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Referencias

1. Yu S, Kojima N, Hakomori SI, Kudo S, Inoue S, Inoue Y. Binding of rainbow trout sperm to egg is mediated by strong carbohydrate–tocarbohydrate interaction between (KDN) GM3 (deaminated neuraminyl ganglioside) and Gg3–like epitope. Proc Natl Acad Sci USA 2002; 99:2854–2859. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.052707599

2. Alavi SMH, Cosson J. Sperm motility in fishes: (I) Effects of temperature and pH: a review. Cell Biol Int 2005; 29: 101–110. http://dx.doi.org/10.1016/j.cellbi.2004.11.021

3. Coward K, Bromage NR, Hibbitt O, Parrngton J. Gamete physiology, fertilization and egg activation in teleost fish. Rev Fish Biol Fisher 2002; 12:33–58. http://dx.doi.org/10.1023/A:1022613404123

4. Cruz–Casallas PE, Pardo–Carrasco SP, Arias–Castellanos JA, Lombo–Castellanos PE, Lombo–Rodrıiguez DA, Pardo–Mari-o JE. Cryopreservation of yamú Brycon siebenthalae milt. J World Aquac Soc 2004; 35: 529–535. http://dx.doi.org/10.1111/j.1749-7345.2004.tb00120.x

5. Mansour N, Ramoun A, Lahnsteiner F. Quality of testicular semen of the African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822) and its relationship with fertilization and hatching success. Aquacult Res 2005; 36:1422–1428. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2109.2005.01363.x

6. Medina–Robles VM, Mira–López T, Cruz–Casallas PE. Efectos de diferentes inductores hormonales sobre la movilidad y velocidad espermática del yaque (Leiarius marmuratus). En: memorias IV Congreso Colombiano de acuicultura. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21:455–522.

7. Kime DE, Van Looka KJW, McAllister BG, Huyskensb G, Rurangwa E, Ollevier F. Computer–assisted sperm analysis (CASA) as a tool for monitoring sperm quality in fish. Comp Biochem Phys 2001; 130: 425–433. http://dx.doi.org/10.1016/s1532-0456(01)00270-8

8. Ciereszco A. Chemical composition of seminal plasma and its physiological relationship with sperm motility, fertilizing capacity and cryopreservation success, In: Hadi, S.M., Cosson, J., Coward, K., Rafiee, G. (Eds.). Fish Spermatology 2007; 281–316.

9. Lahnsteiner F. Morphology, fine structure, biochemistry, and fuction of the spermatic ducts in marine fish. Tissue Cell 2003; 35:363–373. http://dx.doi.org/10.1016/S0040-8166(03)00057-0

10. Rurangwa E, Kime DE, Ollevier F, Nash JP. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture 2004; 234:1–28. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.12.006

11. Cruz–Casallas PE, Medina–Robles VM, Velasco–Santamaría YM. Seasonal variation of sperm quality and the relationship between spermatocrit and sperm concentration in yamú Brycon amazonicus. N Am J Aquacult 2007; 69:259–165. http://dx.doi.org/10.1577/A06-002.1

12. Guerrero ACE. Treinamento alimentar de pintado Pseudoplatystoma coruscans (Agassiz, 1829): Sobrevivência, crescimento e aspectos econômicos. [tesis de maestría]. Jaboticabal, Brazil: São Paulo Uni; 2003.

13. Pinzón–Arciniegas SM, Mojica–Rodríguez JE, Cruz–Casallas PE. Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquía 2005; 9(2):28–37.

14. Medina–Robles VM, Guarnizo–Pineda M, Ramírez–Merlano JA, Otero–Paternina AM, Mira T, Pacheco–Murillo R, Velasco–Santamaría YM, Cruz–Casallas PE. Caracterización y ensayos preliminares de crioconservación seminal de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum – Linnaeus, 1766). En memorias XIII Jornada de Acuicultura. Villavicencio: Universidad de los Llanos: 2007.

15. Cruz–Casallas PE, Medina–Robles VM, Velasco–Santamaría. Seasonal Variation of Sperm Quality and the Relationship between Spermatocrit and Sperm Concentration in Yamu´ Brycon amazonicus. N Am J Aquacult 2007; 69:159–165. http://dx.doi.org/10.1577/A06-002.1

16. Duarte M, Marbá N, Holmer M. Rapid domestication of marine species. Science 2007; 16:382–383. http://dx.doi.org/10.1126/science.1138042

17. Mylonas CC, Fostier A, Zanuy S. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. Gen Comp Endocrinol 2010; 165:516–534. http://dx.doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.03.007

18. Mira T, Murillo–Pacheco R, Ramirez–Merlano JA, Otero–Paternina AM, Berruecos–Zapata BE, Medina–Robles VM, Cruz–Casallas PE. Ensayos preliminares de reproducción inducida de yaque Leiarius marmuratus con extracto de hipófisis de carpa. En: memorias IV Congreso Colombiano de acuicultura. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21: 455–522.

19. Viveiros ATM, Godinho HP. Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: a review. Fish Physiol Biochem 2008; 137–150.

20. Cacot P, Eeckhourte P, Muon DT, Trieu NV, Legengdre M, Mariojouls, C, et al. Induced spermiation and milt management in Pangasius bocourti (Sauvage, 1880). Aquaulture 2003; 215: 67–77. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00032-7

21. Kwantong S, Bart AN. Cryopreservation of black ear catfish, Pangasius larnaudii, (Bacourt) sperm. Aquacult Res 2006; 37: 955–957. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2109.2006.01499.x

22. Mansour N, Lahnsteiner F, Berger B. Metabolism of intratesticular spermatozoa of a tropical teleost fish (Clarias gariepinus). Comp Biochem Phys part B 2003; 135: 285–296. http://dx.doi.org/10.1016/S1096-4959(03)00083-6

23. Rurangwa E, Volckaert FAM, Huyskens IG, Kime IDE, Ollevier, F. Quality control of refrigerated and cryopreserved semen using computer–assisted sperm analysis (casa), viable staining and standardized fertilization in african catfish (Clarias gariepinus). Theriogenology 2001; 55: 751–769. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00441-1

24. Wamecke D, Pluta HJ. Motility and fertilizing capacity of frezen/thawed common carp (Cyprinus carpio L) sperm using dimetil–acetamida as the mam cryoprotectant. Aquaculture 2003; 215: 167–185. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00371-X

25. Tan–Fermin JD, Miura T, Adachi S, Yamauchi K. Seminal plasma composition, sperm motility, and milt dilution Asian catfish Clarias macrocephalus (Gunther). Aquaculture 1999; 171: 323–338. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(98)00402-5

26. Ciereszko A, Dabrowski K, Toht GP, Christ SA, Glogowski J. Factors affecting motility characteristics and fertilizing ability of sea Lamprey spermatozoa. Trans Am Fish Soc 2002; 131: 193–202. http://dx.doi.org/10.1577/1548-8659(2002)131<0193:FAMCAF>2.0.CO;2

27. Linhart O, Rodina M, Bastl J, Cosson J. Urinary bladder, ionic composition of seminal fluid and urine with characterization of sperm motility in tench (Tinca tinca). J Appl Ichthyol 2003; 19: 177–81. http://dx.doi.org/10.1046/j.1439-0426.2003.00470.x

28. Alavi SMH, Cosson J, Karami M, Hossein A, Amiri BM. Chemical composition and osmolality of seminal fluid of Acipenser persicus; their physiological relationship with sperm motility. Aquacult Res 2004; 35: 1238–1243. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2109.2004.01132.x

29. Suquet M, Rouxel C, Cosson J, Severe A, Quemener L, Fauvel C. Changes in atlantic cod (Gadus morhua) sperm quality with time, In: Hendry, C.I., Van Stappen, G., Wile, M., Sorgeloss, P. (Eds.). Larvi 2005, Eur. Aquac. Soc., sp. Publication 2005. p. 503–505.

30. Alavi SMH, Rodina M, Viveiros ATM, Cosson J, Gela D, Boryshpolets, S, et al. Effects of osmolality on sperm morfphology, motility and flagelar wave parameters in Northern pike (Esox lucius L.). Theriogenology 2009; 72: 32–43.

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