Evaluación in vitro de hongos nematófagos para el control biológico de nemátodos gastrointestinales de rumiantes

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Autores

Martha Orozco Víctor Álvarez Ana Jiménez Oscar Acuña

Resumen

Objetivo. Determinar la actividad depredadora in vitro de cepas de hongos nematófagos autóctonos de Costa Rica. Materiales y métodos. Dieciséis cepas de hongos nematófagos nativos de Costa Rica de los géneros Candelabrella musiformis, Arthrobotrys oligospora y Dactylella sp. Se evaluó in vitro la actividad depredadora de los hongos frente a nemátodos gastrointestinales como Haemonchus spp., Oesophagostomum sp. y Trichostrongylus sp aislados de pequeños rumiantes. Resultados. La actividad de los hongos fue muy heterogénea, presentándose resultados que van desde 9.8 a 99.6% de depredación. Conclusiones. El análisis estadístico demostró diferencias significativas en la actividad de los hongos; sin embargo, las cepas de A. oligospora mostraron un mejor desempeño en la captura de nemátodos comparado con las cepas de C. musiformis y Dactylella sp. La heterogeneidad encontrada responde a factores como: origen de las cepas, características intrínsecas de las mismas y especies de larvas utilizadas.

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Referencias

1. Nari A, Eddi C, Martins JR y Benavides E. Resistencia a los antiparasitarios: Estado actual con énfasis en América Latina no. 157. Roma: Estudio FAO Producción y Sanidad Animal; 2003.

2. Waller JP. Anthelmintic resistance. Vet Parasitol 1997; 72:391–412. http://dx.doi.org/10.1016/S0304-4017(97)00107-6

3. González CME, Mendoza de Gives P and Quiróz RH. Comparison of the trapping ability of Arthrobotrys robusta and Monacrosporium gephyropagum on infective larvae of Strongyloides papillosus. J Helminthol 1998; 72:209–213. http://dx.doi.org/10.1017/S0022149X0001645X

4. García RC. Ecoepidemiología y control de parasitosis. Ganadería ecológica [en línea] 2001 [acceso: 7 octubre 2003]. URL disponible en: http:// www.ganadería-ecologica.com/ documentos/ articulo_final.phtml?codigo=41

5. Cole GT and Kendrick B. (editors). Biology of Conidial Fungi Vol. 2. EUA: Academic Press; 1981.

6. Barrón GL. The nematode destroying fungi. Lancaster, Pennsylvania: Editorial Lancaster Press, Inc; 1977.

7. Larsen M . Biological control o f helminths. Int J Parasitol 1999; 29:139– 146. http://dx.doi.org/10.1016/S0020-7519(98)00185-4

8. Araújo JV; Assis RCL; Campos AK; Mota MA. Antagonistic effect of nematophagus fungi Monacrosporium, Arthrobotrys and Duddingtonia on infective Cooperia sp. and Oesophagostomum sp. larvae. Arq Bras Med Vet Zootec 2006; 58(3):373–380. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352006000300014

9. Paraud C; Pors I; Chicard C; Chartier C. Comparative efficacy of the nematode-trapping fungus Duddingtonia flagrans against Haemonchus contortus, Teladorsagia circumcincta and Trichostrongylus colubriformis in goat faeces: influence of the duration and the temperature of coproculture. Parasitol Res 2006; 98:207-213. http://dx.doi.org/10.1007/s00436-005-0028-4

10. Campos AK; Araújo JV; Guimarães MP; Dias AS. Resistance of different fungal structures of Duddingtonia flagrans to the digestive process and predatory ability on larvae of Haemonchus contortus and Strongyloides papillosus in goat faeces. Parasitol Res 2009; 105: 913 – 919. http://dx.doi.org/10.1007/s00436-009-1476-z

11. Mendoza de Gives P, Flores CJ, Herrera RD, Vázquez PV, Liébano HE, Ontiveros FGE. Biological control of Haemonchus contortus infective larvae in ovine faeces by administering an oral suspensión of Duddingtonia flagrans chlamydospores to sheep. Rev Latinoam Microbiol 1998; 72:343–347. http://dx.doi.org/10.1017/s0022149x00016710

12. Hernández GJ. (Compilador). Técnicas Coproparasitológicas. Escuela de Medicina Veterinaria. Universidad Nacional de Costa Rica: Heredia; 2001.

13. Monoson LR. Trapping effectiveness of five species of nematophagus fungi cultured with mycophagus nematodes. Mycologia 1968; 60:788-801. http://dx.doi.org/10.2307/3757384

14. Stirling RG. Biological control of plant parasitic nematodes: progress, problems and prospects. United Kingdom, CAB International, 1991.

15. Durán MJ. Guía de ingredientes activos de bioplaguicidas. CATIE [en línea] 2004 [acceso: 12 septiembre 2005]. URL disponible en: http:// www.bioplaguicidas.org/ Bioplaguicidas04/Documentos/ libros%20BPNOQ/ guia%20ingredientes%20enero%202004.pdf

16. Mendoza de Gives P, Zavaleta ME, Herrera RD, Quiróz RH. In vitro capability of Arthrobotrys spp. on infective larvae of Haemonchus contortus and Nacobbus aberrans. J Helminthol 1994; 68:223-229. http://dx.doi.org/10.1017/S0022149X00014383

17. Wolstrup J, Nansen P, Grønvold J, Henriksen SA, Larsen M. Toward practical biological control of parasitic nematodes in domestic animals. J Nematol 1996; 28(2):129-132.

18. Flores CJ, Herrera RD, Vázquez PV, Flores CR, Líebano HE, Mendoza de Gives P. Acción depredadora in vitro de ocho aislados de hongos contra el nemátodo Panagrellus redivivus. Rev Latinoam Microbiol 1999; 41:239-244.

19. Flores CJ, Herrera RD, Mendoza de Gives P, Líebano HE, Vázquez PVM, López AME. The predatory capability of three nematophagus fungi in the control of Haemonchus contortus infective larvae in ovine faeces. J Helminthol 2003; 77:1-8.

20. Dijksterhuis J, Veenhuis M, Harder W, Nordbring-Hertz B. Nematophagus fungi: structure/function relationships and physiological aspects. Adv Microb Physiol 1994; 36: 112-143.

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