Desarrollo embrionario y estrategias antiluteoliticas hormonales en programas de transplante de embriones bovinos

Contenido principal del artículo

Autores

Néstor Tovío Arturo Duica Henry Grajales

Resumen

Durante el desarrollo embrionario se establecen múltiples interacciones entre hormonas, factores de crecimiento (FC) y diferente tipo de moléculas, con lo cual se genera una serie de señales que desencadenan el reconocimiento materno de preñez (RMP) entre los días 15 y 17, momento en el cual se genera un “periodo crítico”, cuando el endometrio libera la hormona prostaglandina F2α (PGF2 )para causar regresión del cuerpo lúteo (CL), en el cual se sintetiza progesterona (P4), hormonaα encargada de favorecer un adecuado ambiente uterino para el desarrollo embrionario y el mantenimiento de la preñez. El embrión en desarrollo genera señales antiluteolíticas que bloquean la producción de la PGF2 , por lo que se podría sugerir que el mantenimiento de la preñez es dependiente de la efectividadα de este bloqueo, entre otros factores; el cual es generado por la acción del Interferón tau (IFN-τ), producido en las células mononucleares del trofoblasto embrionario. Este bloqueo garantiza la integridad del CL y de esta forma la producción normal de P4. Por lo anterior se podría pensar que la manipulación estratégica apoyada hormonalmente, mejora las condiciones para el efectivo bloqueo de los agentes luteolíticos que tienen su mayor actividad durante el llamado “periodo crítico”, con lo cual se mejora la tasa de sobrevivencia en programas de transplante embrionario ya que se crearía un ambiente uterino adecuado para el establecimiento y normal desarrollo del embrión. Por esto mismo, últimamente se han planteado mecanismos de apoyo hormonal que causan un bloqueo apropiado en cuanto a la producción de PGF uterina durante los días15 y 17 del ciclo estral.

Palabras clave:

Detalles del artículo

Referencias

1 Neider G, Corder C. Qualitative histochemical measurement of pyruvate and lactate in the mouse oviduct during the estrus cycle. J Histochem Cytochem 1982; (30): 1051.

2 Spencer T, Burghardt R, Johnson G, Bazer FW. Conceptus signals for establishment and maintenance of pregnancy. Anim Reprod Sci 2004; 839: 537– 550. http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2004.04.014

3 Rodríguez J. Mecanismos para el reconocimiento materno de la pre-ez. En: Reproducción Bovina. Editor González C. Maracaibo – Venezuela: Ed. Fundación GIRARZ; 2001.

4 Santos J, Thatcher W, Chebel R, Cerri R, Galvão K. The effect of embryonic death rates in cattle on the efficacy of estrus synchronization programs. Anim Reprod Sci 2004; (83): 513–535.

5 Sreenan J, Diskin M. Early embryonic mortality in the cow: its relationship with progesterone concentration. Vet Rec 1982; (112): 517-521.

6 Binelli M, Thatcher W, Mattos R, Baruselli P. Antiluteolytic Strategies to Improve Fertility in Cattle. Theriogenology 2001; (56): 1451–1463.

7 Dailey RA, Inskeep EK, Lewis PL. Pregnancy failures in cattle: a perspective on embryo loss. In: Proceedings of the XVIIIth International Conference on Reproduction of Farm Animals, Slovakia; 2002.

8 Thatcher W, Guzeloglu A, Binelli M, Hansed TR, Pru JK. Uterine conceptus interactions and reproductive failure in cattle. Theriogenology 2001; (56): 1435–1450.

9 Thatcher W, Bartol F, Knickerbocker J, Curl J, Wolfenson D, Bazer F. Maternal recognition of pregnancy in cattle. Dairy Sci 1984; 67: 2797– 2811. http://dx.doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(84)81636-7

10 Araújo M, Vale V, Ferreira A, Sá W, Barreto J, Filho L. Secreção de interferon-tau em embriões bovinos produzidos in vitro frescos e congelados. Interferon tau secretion in cattle embryos in vitro fertilized before and after cryopreservation. Arq Bras Med Vet Zootec 2005; (57): 751-756.

11 Watson AJ, Hogan A, Hahnel A, Wiemer KE, Schultz GS. Expression of growth factor ligand and receptor genes in the preimplantation bovine embryo. Mol Reprod Dev 1992; (31): 87-95.

12 Matsui M, Takahashi Y, Hishinuma M, Kanagawa H. Stimulation of the development of bovine embryos by insulin and IGF-I is mediated through the IGF-I receptor. Theriogenology 1997; 48: 605- 616. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00277-X

13 Johnson, M. Intrinsec and extrinsec factors in preimplantation development Reprod Fert 1979; 55: 255.

14 Kaplan JH. Biochemistry of K.ATPase. Annu Rev Biochem 2002; 71: 511–535.

15 Pe-a M, Góngora A, Estrada J. Factores de crecimiento en el desarrollo folicular, embrionario temprano e implantación. Implicaciones en la producción de embriones bovinos. Rev MVZ Córdoba 2007; 12(1): 942–954.

16 O´neill C. Autocrine mediators are required to act on the embryo by the 2-cell stage to promote normal development and survival of mouse preimplantation embryos in vitro. Molec Reprod Dev 1998; 58: 1303–1309. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod58.5.1303

17 Roberts RM, Ealy AD, Alexenko AP, Han CS, Ezashi T. Trophoblast interferons. Placenta 1999; 20: 259–264. http://dx.doi.org/10.1053/plac.1998.0381

18 Johnson GA, Burghardt RC, Spencer TE, Newton GR, Ott TL, Bazer FW. Ovine osteopontin II. Osteopontin and ávâ3 integrin expression in the ovine uterus and conceptus during the peri-implantation period. Biol Reprod 1999; 61: 892–899. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod61.4.884
http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod61.4.892

19 Johnson GA, Spencer TE, Burghardt RL, Taylor KM, Gray CM, BazerFW. Proyesterone modulation of osteopontin give expression in ovine uterus. Biol Reprod 2000; 42: 104.

20 Kimmins S, MacLaren LA. Cyclic modulation of integrin expression in bovine endometrium. Biol Reprod 1999; 61: 1267– 1274. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod61.5.1267

21 Lasky LA, Singer M, Dowbenko D, Imal Y, Henzel W, Grimley C. An endothelial ligand for L-selectin is a novel mucin-like molecule Cell 1992; 69: 927–938.

22 Roberts M. Interferon-tau, a Type 1 interferon involved in maternal recognition of pregnancy. Cytokine & Growth Factor Reviews 2007; 18: 403–408. http://dx.doi.org/10.1016/j.cytogfr.2007.06.010

23 Burgdardt R, Bowen J, Newton G, Bazer F. Extracellular matrix and the implantation cascade in pigs. Reprod Fertil 1997; 52: 151–164.

24 Burgess k, Kalph M, Jenkin G, Thorburn, G. Effect of oxytocin and estradiol on uterine prostaglandin release in nonpregnant and early pregnant ewes. Biol Reprod 1990; 42: 822-833. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod42.5.822

25 Lessey BA, Yeh IT, Castelbaum AJ, Fritz MA, Llesanmi AO, Korzeniowski P, et al. Endometrial progesterone receptors and markers of uterine receptivity in the windows of implantation. Fertil Sterili 1996; 659: 477- 483.

26 Barnea E, Choi Y, Leavis P. Embryo maternal signaling prior to implantation. En: textbook of obstetrics ginecology I. Munteanu. Ed. SIEP, Boston 2000.

27 Thatcher W, Moreira F, Santos J, Mattos R, lopez F, Pancarci S, et al. Effects of hormonal treatments on reproductive performance and embryo production. Theriogenology 2002; 55: 75–90. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(00)00447-7

28 Olivera M. Gestación. En Galina C. (Ed), Reproducción de animales domésticos. México: Ed. Limusa; 2006.

29 Charpigny G, Reinaud P, Tamby JP, Creminon C, Guillomot. Cyclooxygenase- 2 unlike cyclooxygenase-1 is highly expressed in ovine embryos during the implantation period. Biol Reprod 1997; 57: 1032–1040. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod57.5.1032

30 Campanile G, Di Palo R, Neglia G, Vecchio D, Gasparrini B. Corpus luteum and embryonic mortality in buffaloes treated with a GnRH agonist, hCG and progesterone. Theriogenology 2007; 67: 1393–1398. http://dx.doi.org/10.1016/j.theriogenology.2007.03.001

31 Battye K, Parkinson T, Lenner L, Evans G, O´Neill C, lamming G. Potentialsynergism between platelet-activating factor and 1 – recombinant interferon in promoting luteal maintenance in cyclic ewes. J Reprod Fertil 1993; 97: 21. http://dx.doi.org/10.1530/jrf.0.0970021

32 Baruselli P, Bó G, Reis E, Marques M, Sá M. Introducción de la IATF en el manejo reproductivo de reba-os de ganado de engorde en Brasil. Bogotá, Colombia: Congreso Internacional de Reproducción Bovina; 2005.

33 Mantovani A, Baruselli P, Bó GA, Cavalcante A, Gacek F. Aumento de las dimensiones del folículo dominante y del cuerpo lúteo, concentración plasmática de progesterona y de la tasa de aprovechamiento de receptoras de embriones bovinos sincronizadas con CIDR-B® por tiempo prolongado. Revista Brasilera de reproducción animal 2002.

34 Vasconcelos J, Sartori R, Oliveira H, Guenther J, Wilbank M. Reduction is size of the ovulatory follicle reduces subsequent luteal size and pregnancy rate. Theriogenology 2001; 56: 307–314. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00565-9

35 Lopes AS, Butler ST, Gilbert RO, Butler WR. Relationship of pre-ovulatory follicle size, estradiol concentrations and season to pregnancy outcome in dairy cows. Anim Reprod Sci 2007; 99: 34-43. http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2006.04.056

36 Spell AR, Beal WE, Corah LR, Lamb GC. Evaluating recipients and embryo factors that affeect pregnancy rates of embryo transfer in beef cattle. Theriogenology 2001; 56: 287–297. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00563-5

37 Mann G, Fray M. Lamming, G. Effects of time of progesterone supplementation on embryo development and interferon-tau production in the cow. Vet J 2006; 171: 500–503. http://dx.doi.org/10.1016/j.tvjl.2004.12.005

38 Moreira F, Badinga L, Burnley C, Thatcher WW. Bovine somatotropin increases embryonic development in superovulated cows and improves post-transfer pregnancy rates when given to lactating recipient cows. Theriogenology 2004; 57: 1371–87. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00719-1

39 Kerbler TL, Buhr MM, Jordan LT, Leslie KE, Walton JS. Relationship between maternal plasma progesterone concentration and interferon-tau synthesis by the conceptus in cattle. Theriogenology 1997; 47: 703- 714. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00028-9

40 Mann GE, Lamming GE. The influence of progesterone during early pregnancy in cattle. Reprod Dom Anim 1999; 34: 269– 274. http://dx.doi.org/10.1111/j.1439-0531.1999.tb01250.x

41 Baruselli P, Marques O, Nasser LF, Reis EL, Bó G. Effect of eCG on pregnancy rates of lactating zebu beef cows treated with CIDR–B devices for timed artificial insemination. Theriogenology 2003; 59: 214.

42 Murphy B, Martinuk S. Equine chorionic gonadotropin. Endocrine Rewiews 1991; 12: 27– 44. http://dx.doi.org/10.1210/edrv-12-1-27

43 Madureira EH, Marques MO, Baruselli P, Nasser LF, Rodrigues CA. Efeito do tratamiento com eCG na taxa de concepção de vacas nelore com diferentes escores de condição corporal inseminadas em tempo fixo (analise Retrospectiva). Acta Scientiae Veterinarae 2004; 32(suplemento): 228.

44 Everton L, Baruselli P. Sincronización de receptoras cruce por cebú en condiciones tropicales. Bogotá, Colombia: Cuarto seminario de reproducción de grandes animales (memorias); 2003.

45 Melanie J, Starbuck A, Dailey E, Keith I. Factors affecting retention of early pregnancy in dairy cattle Anim Reprod Sci 2004; 84: 27–39.

46 Nasser L, Reis E, Oliveira M, Bó GA, Baruselli P. The use of hormonal treatments to improve reproductive performance of anestrous beef cattle in tropical climates. Anim Reprod Sci 2004; (82),(83):479–486.

47 Quesada JM y Ortiz JJ. Sincronización de receptoras de embriones tratadas con CIDR, benzoato de estradio, D Cloprostenol asociado o no a eCG. IRAC: VII Simposio de reproducción animal; 2007.

48 Mamani E, Ortiz J, Quezada M. Evaluación de diferentes dosis de eCG en tratamientos de sincronización de celos en receptoras de embriones. IRAC: VII simposio de reproducción animal; 2007.

49 Bó GA. Sincronización de celos para programas de Inseminación Artificial y Transferencia de embriones Bovinos. Instituto de Reproducción Animal de Córdoba Argentina (IRAC) 2003.

50 Nishigai M, Kamomae H, Tanaka T, Kaneda Y. Improvement of pregnancy rate in Japanese Black cows by administration of hCG to recipients of transferred frozen – thawed embryos. Theriogenology 2002; 58: 1597-606. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(02)01062-2

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.