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Efecto de tres diferentes fracciones de peso molecular alto del medio condicionado por células BRL en el desarrollo embrionario bovino in vitro.

Efecto de tres diferentes fracciones de peso molecular alto del medio condicionado por células BRL en el desarrollo embrionario bovino in vitro.



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Salgado O., R., Barrera V., J., Correa Q., S., & Estrada L., L. (2001). Efecto de tres diferentes fracciones de peso molecular alto del medio condicionado por células BRL en el desarrollo embrionario bovino in vitro. Revista MVZ Córdoba, 6(2). https://doi.org/10.21897/rmvz.531

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PlumX
Roger Salgado O.
José Barrera V.
Samuel Correa Q.
Luzardo Estrada L.

Roger Salgado O.

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Medicina Animal

José Barrera V.

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Medicina Animal

Samuel Correa Q.

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Medicina Animal

Luzardo Estrada L.

Universidad de Córdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Medicina Animal

Para investigar la presencia de factores embriotróficos en el medio condicionado por células BRL (MCBRL), tres fracciones de peso molecular alto (>1, >5 y >10 Kda.) del MCBRL fueron adicionadas al medio TCM-199. Los oocitos fueron extraídos por el método de corte de ovarios de vacas sacrificadas en matadero, fueron madurados en una tensión del 5% de C0 2 en aire a 39ºC por 24 horas en medio TCM-199 suplementado con suero de vaca en estro al 10%. Después de la maduración, los oocitos fueron lavados tres veces en medio TL-HEPES y transferidos a las gotas de fertilización. Los oocitos fueron fertilizados en gotas de 50 ml de medio TL-FERT bajo aceite mineral espermatozoides congelados-descongelados, seleccionados por Swim-up y capacitados con heparina. Después de 18 a 20 horas post-fertilización, los cigotos fueron cultivados en MCBRL (control), fracción >1, >5 y >10 KDa. Las diferentes fracciones del MCBRL incrementaron la proporción de embriones que alcanzaron el estado de divididos (2- 8 células) después de tres días de cultivo (61-75%). La mayor proporción de embriones divididos fue alcanzada en la fracción > de 10 KDa. El desarrollo embrionario al estado de mórula/blastocisto no mostró diferencias significativas en las diferentes condiciones de cultivo (p>0.05). El recuento de núcleos no mostró diferencias significativas (P>0.05) en las diferentes condiciones de cultivo, con recuentos promedio en el rango de 15-23 células por embrión. En conclusión, los resultados muestran que la remoción de factores de peso molecular bajo del MCBRL mejoran el desarrollo embrionario al estado de divididos, pero es deficiente para promover el desarrollo mórula/blastocisto

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  1. Bavister B.D. Co-culture for embryo development: is it really necesary?. Human Reprod. 1992; 7:339-1341.
  2. Bavister B.D. Culture of preimplantation embryos: facts and artifacts. Hum. Reprod 1995; 1:91-148. http://dx.doi.org/10.1093/humupd/1.2.91
  3. Boice M.L. Mavrogianis P.A, Murphy C.N, Verhage H.G. Prather R.S, Day B.N . Immunocytochemical analysis of the association of bovine oviduct-specific secretory glycoprotein with early embryos. Theriogenology. 1992; 37:194. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(92)90263-Q
  4. Bongso A, Fong C, Ratnam S. The search for improved in vitro system should not be ignored: embryo co-culture may be one of them. Human Reprod. 1993; 8:1155-1162.
  5. Coon H.G. Clonal culture of differentiated rat liver cells. J Cell Biol. 1968; 39:29.
  6. Chacón L. Evaluación de diferentes compuestos en la estandarización de la técnica de fertilización in vitro en bovinos. Tesis para optar al título de Magister Scienciae en Salud Animal y Producción Animal. 1997; Universidad Nacional Colombia.
  7. Ferry L, Mermillod P, Massip A, Dessy F. Bovine embryo cultured in serum-poor oviductconditioned medium need coperation to reach the blastocist stage. Theriogenology. 1994; 42:445-453. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(94)90682-9
  8. Gandolfi F. Autocrine, paracrine and environmental factors influencing embryonic development from zygote to blastocyst. Theriogenology. 1994; 41:95-100. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(05)80053-6
  9. Gardner D.K, Laner M, Spitzer A, Batt P. Enhanced rates of cleavage and development for sheep zygotes cultured to the blastocyst stage in vitro in the abscence of serum and somatic cells: Amino acid vitamins and culturing embryos in grupo stimulate development. Biol Reprod. 1994; 50:390-400. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod50.2.390
  10. Grisart B, Massip A, Dessy F. Cinematographic analysis of bovine embryo development in serumfree oviduct-conditioned medium. Reprod 1994; 101:257-264. http://dx.doi.org/10.1530/jrf.0.1010257
  11. Hernández-Ledezman J.J, Villanueva C, Sikes D.J, Kubishch H.M. Increasing the rate of blastocyst formation and hatching from in vitro-produced bovine zygotes. Theriogenology. 1996; 46:961- 969. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(96)00260-9
  12. Heyman Menezo. In vitro cleavage of bovine and ovine early embryos: improved development using coculture with trophoblastic vesicles. Theriogenology. 1987; 27:59-68. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(87)90070-7
  13. Kane MT. In vitro growth of preimplantation rabbit embryo. En: Bavister BD (ed) The Mammalian preimplantation Embryo. New york: Plenum Press. 1987; 193-217. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4684-5332-4_10
  14. Liu L, Chan S, Yeung W. Human oviductal cells produce high molecular weight factor(s) that improves the development of mouse embryo. Mol Human Reproduc. 1995; 10:2781-2786. http://dx.doi.org/10.1093/molehr/1.8.395
  15. Mermillod P, Vansteenbrugge A, Wils A, Mourmeauz J.L, Massip A, Dessy F. Characterization of the embryotrophic activity of exogenous protein-free oviduct-conditioned medium used in culture of cattle embryos. Biol Reprod 1993; 49:582-587. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod49.3.582
  16. Minami N, Utsumi K, Iritani A. Effects of low molecular weight oviductal factors on the development of mouse one-cell embryos in vitro. J Reprod. Fert. 1992; 96:735-745. http://dx.doi.org/10.1530/jrf.0.0960735
  17. Nagao Y, Saeki K, Hoshi M, Takahashi Y. Effects of water quality on in-vitro fertilization and development of bovine oocytes in protein-free medium. Theriogenology. 1995; 44:433-444. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(95)00197-G
  18. Pinyopummintr T, Bavister B.D. Development of bovine embryos in a cell-free culture medium: Effects of type os serum, timing of its inclusion and heat inactivation. Theriogenology 1994; 41:1241-1249. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(94)90481-W
  19. Pinyopummintr T, Bavister B.D. Energy substrate requirements for in vitro development of early cleavage-stage bovine embryo. Mol ReprodDevelop. 1996; 44:193-199. http://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1098-2795(199606)44:2<193::AID-MRD8>3.0.CO;2-I
  20. Pursel V.G, Wall R.J, Rexroad C.E, Hammer R.E. and Brinster R.L. A rapid whole-mount staining procedure for nuclei of mammalian embryo. Theriogenology. 1985; 24:687-691. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(85)90167-0
  21. Reed W.A, Tae-Kwang S, Bunch T.D. and White K.L. Culture of in vitro fertilized bovine embryos with bovine oviductal epithelial cells, buffalo rat liver (BRL) cells, or BRL-cell-condtioned medium. Theriogenology. 1995; 45:439-449. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(95)00380-Q
  22. Rieger D, Grisart B, Semple E, Van Langendonckt A, Betteridge K.J, Dessy F. Comparisson of the effects of oviductal cell co-culture and oviduct al cell-conditioned medium on the development and metabolic activity of cattle embryos. J Reprod. Fert. 1995; 105:91-98. http://dx.doi.org/10.1530/jrf.0.1050091
  23. Schagger H, Von J.G. Tricina-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the rang from 1 to 100 KDa. Anal Biochem 1987; 166:368-379. http://dx.doi.org/10.1016/0003-2697(87)90587-2
  24. Smith A.G, Hooper M.L. Buffalo rat liver cells produce a diffusible activity which inhibits the differentiation of murine embryonal carcinoma and embryonic stemm cells. Dev Biol 1987; 121:1-9. http://dx.doi.org/10.1016/0012-1606(87)90132-1
  25. Stojkovic M, Wolf E, Van Langendonckt A, Vansteenbrugge A, Charpigny G, Reinaud P, Gandolfi F, Brevivi T, Mermillod P, Terqui M, Brem G, Massip A. Correlations between chemical parameters, mitogenic activity and embriotrophic activity of bovine oviduct-conditioned medium. Theriogenology. 1997; 48:659-673. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00282-3
  26. Trouson A. Current status of IVM/IVF and embryo culture in humans and farm animals. Theriogenology. 1994; 41:57-66. http://dx.doi.org/10.1016/S0093-691X(05)80049-4
  27. Van Inzen W.G. Van Stekelemburg-Hamers Weima S.M. Kruip T, Bevers M, Mummery C.L. Culture of bovine embryo to blastocyst stage using buffalo rat liver (BRL) cells. Theriogenology. 1994; 43:723-738. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(95)00015-Z
  28. Vansteenbrugge A, Van Langendonckt A, Seutnaire C. Massip A. Dessy F. In vitro development of bovine embryo in buffalo rat liver or bovine oviduct-conditioned medium. Theriogenology. 1994; 42:931-940. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(94)90116-Z
  29. Vansteenbrugge A, Van Langendonckt A, Donnay I, Massip A, Dessy F. Effect of high molecular weight factors present in bovine oviductconditioned medium on in vitro bovine embryo development. Theriogenology. 1996;46:631-641. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(96)00214-2
  30. Voelkel S.A. Hu Y.X. Effect Of Gas Atmosphere On The Development Of on-cell bovine embryos in two culture systems. Theriogenology. 1992; 37:1117-1131. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(92)90109-5
  31. Wegner C.C. Killian G.J. In vitro and in vivo association of anoviduct estrus-association protein with bovine pellucida. Molec Reprod Dev 1991; 29:77-84. http://dx.doi.org/10.1002/mrd.1080290112
  32. Yadav R.B. King W.A. Betteridge K.J. Relationships between the completion of first cleavage and the chromosomal complement, sex, and development rates of bovine embryos generated in vitro. Molec Repro Dev. 1993; 36:434-439. http://dx.doi.org/10.1002/mrd.1080360405

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