Skip to main navigation menu Skip to main content Skip to site footer

In vitro propagation of Stevia rebaudiana BERT. (Asteraceae-Eupatorieae) via organogenesis

Propagación in vitro de Stevia rebaudiana Bert. (Asteraceae-Eupatorieae) a través de organogénesis



How to Cite
Suárez Padron, I. E., & Salgado, J. A. (2008). In vitro propagation of Stevia rebaudiana BERT. (Asteraceae-Eupatorieae) via organogenesis. Sour Topics, 13(1), 40-48. https://doi.org/10.21897/rta.v13i1.663

Dimensions
PlumX
Isidro Elias Suárez Padron
José Alberto Salgado

Nodal sections from in vitro established Stevia rebaudiana plants were cultured on medium independently supplemented with several NAA/BAP combinations to evaluate their effect on callus induction, friability and organ formation. Callus fresh weight as a result of NAA/BAP supply was determined and finally, BAP and BAP/NAA supply on shoot regeneration was evaluated. Treatments were distributed using a complete randomized design with at least 15 replicates per treatment. ANA turned out to be necessary and sufficient to induce callus formation. Shoot formation occurred during callus induction independently of PGR supply. PGR in the medium had neither effect on fresh weight increase nor on plant regeneration from proliferated callus. A 1.0 mg L-1 ANA + 4.0 mg L-1 BAP supply in the medium is recommended for Stevia rebaudiana plant regeneration vía organogénesis.


Article visits 1508 | PDF visits


Downloads

Download data is not yet available.
  1. Bespalhok, J. y Hattori, K. 1997. Embryogenic callus formation and histological studies from Stevia rebaudiana Bertoni floret explants. Revista Brasileira de Fisiología Vegetal 9(3):185-188
  2. Bespalhok, J.; Hashimoto, J. y Esteves, L. 1993. Induction of somatic embryogenesis from leaf explants of Stevia rebaudiana. Revista Brasileira de Fisiología Vegetal 5(1):51-53
  3. Capote, A.; Fundora, Z. y Pérez, O. 2000. Estudio de la variabilidad inducida en células y plántulas de cebolla (Allium cepa, L.) cv. Caribe-71 regeneradas in vitro. Biotecnología Aplicada 17:241-246
  4. Cassacia, J. y Alvarez, E. 2006. Recomendaciones técnicas para una producción sustentable del ka’a he’e (Stevia rebaudiana (Bertoni)) en el Paraguay. Ministerio de Agricultura y Ganadería – Paraguay, Manual Técnico Nº8, 51p.
  5. Christianson, M. y Warnik, D. 1985. Temporal requirements for phytohormone balance in the control of organogenesis in vitro. Developmental Biology 112:494
  6. Flick, C.; Evans, D. y Sharp, W. 1983. Organogénesis. En: Evans, D.; Sharp, W. y Ammirato, P. (Ed). Handbook of Plant Cell Culture. MacMillan Publishing, Nueva Cork, p13-81
  7. Krikorian, A. 1991. Propagación clonal in vitro. En: Roca, W. y Mroginski, L. (Ed). Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y Aplicaciones. CIAT, Cali, p95-125
  8. Litz, R.; O’Hair, S. y Conover, R. 1983. In vitro growth of Carica papaya L. cotyledons. Scientia Horticulturae 19:287-293
  9. Litz, R. y Jarret, R. 1991. Regeneración de plantas en el cultivo de tejidos: Embriogénesis somática y organogénesis. En: Roca, W. y
  10. Mroginski, L. (Ed). Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y Aplicaciones. CIAT, Cali, p 143-171
  11. Matos, A.; Da Costa, M. y Handro, W. 1995. Morphogenesis and plant regeneration in leaf explants and callus tissues of Capraria biflora cultured in vitro. Revista Brasileira de Fisiología Vegetal 7(2):171-174
  12. Megeji, N.; Kumar, J.; Singh, V.; Kaul, V. y Ahuja, P. 2005. Introducing Stevia rebaudiana, a natural zero-calorie sweetener. Current Science 88(5):801- 804
  13. Montoya, L. 1991. Cultivo de Tejidos Vegetales. Lealon, Medellín, 77p. Mroginski, L. y Roca W. 1991. Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales in vitro. En Roca, W. y Mroginski L. (Ed.). Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y Aplicaciones. CIAT, Cali, P 19-40
  14. Murashige, T. y Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15:473-497
  15. Sánchez, D.; Huamaní, K.; Pascual, E.; Sánchez, H. y Estrada, R. 2005. Efecto de las auxinas y citoquininas en la callogénesis sobre explantes nodales e internodales de Tropaeolum tuberosum (r. and p.) mashua. Memorias XIV Reunión científica ICBAR, Lima
  16. Schwarz, O. y Beaty, R. 1996. propagation from non-meristematic tissues – organogenesis. En: Trigiano, R. y Gray, D. (Ed). Plant Tissue Cultures Concepts and Laboratory Excercises. CRC Press, Boca Raton, 95-104
  17. Siddique, N.; Bari, M.; Khatun, N.; Rahman, M.; Rahman M. y Huda, S. 2003. Plant regeneration from nodal segments derived callus in Hemidesmus indicus (L.) R. Br (Anantamul) an endangered medicinal plant in Bangladesh. Journal of Biological Sciences 3(12):1158-1163
  18. Sivaram, L. y Mukundan, U. 2003. In vitro culture studies on Stevia rebaudiana. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 39:520–523
  19. Solange, E.; Pereira, J.; Ramalho, A.; Arbex, N.; Cardoso, M. y Alves, O. 2002. Indução de calos em erva-de-touro (Tridax procumbens l.) utilizando diferentes reguladores de crescimento e tipos de explantes. Ciencia e Agrotecnologia 26(2):301-308
  20. Soto, A. y Del Val, S. 2002. Extracción de los principios edulcorantes de la Stevia rebaudiana. Revista de Ciencias Agrarias y Tecnología de los Alimentos 20:5-9
  21. Taiariol, D. 1995. Propagación vegetativa de Stevia rebaudiana Bertoni. Tesis Ingeniero Agrónomo, Universidad de Buenos Aires, Buenos Aires.
  22. Tisserat, B. 1985. Embryogenesis, organogenesis and plant regeneration. En: Ixon, R. (Ed). Plant Cell Culture, A Practical Approach. IRL Press, Oxford, p79-105
  23. Villalobos, V. y Thorpe, T. 1991. Micropropagación: conceptos, metodología y resultados. En: Roca, W. y Mroginski, L. (Ed). Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y Aplicaciones. CIAT, Cali, p 128-141
  24. Yaya M, Rodríguez O, Usaquén W y Chaparro W. 2005. Inducción de organogénesis directa en abarco (Cariniana pyriformis Miers.). Agronomía Colombiana 23(1):50-54

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |