Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Producción de Plantas de Caña flecha (gynerium sagitatum aubl.) “Criolla” a través de Micropropagación.

Arrow cane (Gynerium sagitatum Aubl.) “criolla” plant production through micropropagation



Cómo citar
Pastrana, I. J., & Suárez Padron, I. E. (2009). Producción de Plantas de Caña flecha (gynerium sagitatum aubl.) “Criolla” a través de Micropropagación. Temas Agrarios, 14(2), 4-13. https://doi.org/10.21897/rta.v14i2.671

Dimensions
PlumX
Licencia
Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.

La Revista permite al autor(es) mantener los derechos de explotación (copyright)  de sus artículos sin restricciones. El(os) autor(es) acepta(n) la distribución de sus artículos en la web, bajo acceso abierto a nivel local, regional e internacional; la  inclusión y difusión del texto completo, a través del Portal de RevistasRepositorio Institucional de la Universidad de Córdoba; y en todas las bases de  datos especializadas que la Revista considere pertinentes para su indexación, con  el fin de proporcionarle visibilidad y posicionamiento al artículo. Esta revista  provee acceso libre inmediato a su contenido bajo el principio de hacer disponible  gratuitamente la investigación al público, lo cual fomenta un mayor intercambio  de conocimiento global. 

Se autoriza la fotocopia de artículos para fines de uso académico o interno de las  instituciones, citando la fuente, para impresos dirija la solicitud a la Revista  Temas Agrarios. Facultad de Ciencias Agrícolas. Universidad de Córdoba.  Montería. Colombia,. Apartado aéreo No.354, correo electrónico:  revistatemasagrarios@correo.unicordoba.edu.co

Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento NoComercial 4.0 Internacional

Iván Javier Pastrana
Isidro Elías Suárez Padron

Segmentos nodales de caña flecha (Gynerium sagitatum Aubl) cultivar “Criolla” fueron establecidos en tres formulaciones de medio MS semi sólido con el fin de evaluar su efecto en la adaptación a condiciones in vitro. Posteriormente, el efecto de diferentes tratamientos sobre la multiplicación de propágulos y el enraizamiento de brotes producidos en condiciones in vitro fue evaluado, al igual que la adaptación final a condiciones ex vitro. Todos los medios fueron suplementados con (en mg L-1) mio inositol (100), sacarosa (30.000), tiamina HCl (0,4) y TC agar (8.000) (Sigma Co.). Los tratamientos de cada experimento fueron repetidos 15 veces y distribuidos con un diseño completamente al azar. Los datos colectados permitieron observar que el medio MS completo favoreció la adaptación del 100% de los explantes a las condiciones in vitro. La mayor tasa de multiplicación se obtuvo cuando los explante se cultivaron en presencia de 0,5 mg L-1 de BAP, mientras que el mayor número de raíces por explante fue observada en presencia de dosis ≥0,5 mg L-1 de ANA. Las plantas micropropagadas se adaptaron en un 100% a las condiciones ex vitro.

Visitas del artículo 1691 | Visitas PDF


Descargas

Los datos de descarga todavía no están disponibles.
  1. Araméndiz, H., Espitia, M. y Cardona, C. 2009. Valoración de los recursos filogenéticos de caña flecha (Gynerium sagitatum Aubl.) en el caribe colombiano. Produmedios, Bogotá, 108p.
  2. Araméndiz, H., Espitia, M. y Robles, J. 2005. Colección, conservación, caracterización morfoagronómica y producción de semilla de caña flecha (Gynerium sagittatum
  3. Aubl.) del Caribe Colombiano. CIUC, Universidad de Córdoba, Montería, 118p.
  4. Ballesteros, J. y Guardo, T. 1988. Estudio preliminar de la propagación asexual de la caña flecha (Gynerium sagittatum Aubl.). Tesis Ingeniero Agrónomo, Universidad de Córdoba, Montería.
  5. Beltrán, J. y Sehuanes, I. 2004. Micropropagación in vitro de la caña flecha (Gynerium sagittatum) (Aubl) Beauv. c.v. “Criolla” mediante el uso de segmentos nodales. Memorias del XXXIX Congreso de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas, Ibagué, p353.
  6. García, J. y Hernández, H. 2004. Efecto de dos fitorreguladores sobre la formación de raíces en estacas de caña flecha (Gynerium sagittatum Aubl.). Tesis IngenieroAgrónomo, Universidad de Córdoba, Montería.
  7. González, O. 1997. Situación de dos métodos de siembra por estacas de caña flecha (Gynerium sagittatum Aubl.) de la variedad “Martinera” en la región de Montelibano, Córdoba. Tesis Ingeniero Agrónomo, Universidad de Córdoba, Montería.
  8. Hartmann, H., Kester, D., Davies, F. y Geneve, R. 2000. Plant Propagation Principles and Practices. Prentice Hall, Upper Saddle River, p308.
  9. Hernández, H., Araméndiz, H. y Cardona, C. 2005. Influencia del ácido indolbutírico sobre el enraizamiento de esquejes de caña flecha (Gynerium sagittatum Aubl.). Revista Temas Agrarios 10(1):5-13.
  10. Jiménez, V., Castillo, J., Tavares, E., Guevara, E. y Montiel, M. 2006. In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 86(3):389-395.
  11. Kalia, S., Kalia, R. y Sharma, S. 2004. In vitro regeneration of and indigenous bamboo (Bambusa nutans) from internode and leaf explant. Journal of bamboo and Rattan 3(3):217-228.
  12. Kane, M. 1996. Micropropagation from pre-existing meristemos, En: Gray D y Trigiano R (Ed.) Plant Tissue Culture Concepts and Laboratory Excercises. CRC Press, Boca Ratón, p75-86.
  13. Kapoor, P. y Rao, U. 2006. In vitro rhizome induction and plantlet formation frommultiple shoots in Bambusa bambos var. Gigantean Bennet and Gaur by usinggrowth regulator and sucrose. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 85(2):211-217.
  14. Marulanda, M., Gutiérrez, L. y Márquez, M. 2005. Micropropagación de Guadua angustifolia Kunth. Biotecnología Vegetal 27(82):5-15.
  15. Mishra, Y., Rana, P., Shirin, F. y Ansari, S. 2001. Augmenting in vitro shootmultiplication by vipul (triacontanol) and adventitious rhizogenesis by rice branextract in Dendrocalamus strictus. Indian Journal of Experimental Biology 39(2):165-169.
  16. Murashige, T. y Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay withtobacco tissue culture. Physiologia Plantarum 15:473-497
  17. Ndiaye, A., Diallo, M., Niang, D. y Gassama-Dia, Y. 2006. In vitro regeneration of adult trees of Bambusa vulgaris. African Journal of Biotechnology 5 (13):1245-1248.
  18. Pattanavibool, R. y Ramyarangsi, S. 2007. In Vitro Micropropagation of young buds of Bambusa nana. En: http://www.forest.go.th/Research/English/abstracts_silvic/phai.htm [Accedido: 07-29-2008]
  19. Rivera, H., Suárez, I. y Palacio, J. 2009. Análisis de la diversidad genética de caña flecha (Gynerium sagitatum Aubl.) utilizando la técnica de AFLPs. Agricultura Técnica en México 35(1):78-84.
  20. Rivera, H., Suárez, I. y Vallejo, F. 2008. Caracterización molecular de accesiones colombianas de caña flecha (Gynerium sagitatum Aubl) utilizando la técnica de AFLPs. Acta Agronómica 57(4):227-232.
  21. Salisbury, F. y Ross, C. 1994. Fisiología Vegetal. Grupo Editorial Iberoamérica S.A, México D.F., p395-451.
  22. Sanjaya, T., Ratore, S. y Ravishankar, V. 2005. Micropropagation of Pseudoxytenanthera stocksii Munro. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 41(3):333-337.
  23. Saxena, S. y Dhawan, V. 1994. Micropropagation research in south Asia. Constraints to production of bamboo and rattan. INBAR 5:101-113.
  24. Shirin, F. y Rana, P. 2007. In vitro plantlet regeneration from nodal explants of field-grown culms in Bambusa glaucescens Willd. Plant Biotechnology Reports 1(3):141-147.
  25. Suarez, I. 2006. Micropropagación de caña flecha (Gynerium sagitatum Aubl.). CIUC Universidad de Córdoba, Montería, 60p.

Sistema OJS 3.4.0.3 - Metabiblioteca |